Исследование рыбы на гельминты на cintakata.com

Средство от паразитов

Исследование рыбы на гельминты

исследование рыбы на гельминты


Исследование рыбы на гельминты - Предупреждение массовой гибели рыб и правильная организация лечебных мероприятий возможны только после установления причины болезней, т. Диагноз на заболевание рыб ставят на основании эпизоотологического, клинического, патологоанатомического, паразитологического, а в случае необходимости микробиологического или токсикологического исследования, которые проводят в специализированных лабораториях научно-исследовательских институтов или ветеринарно-санитарных станций. Эпизоотологическим исследованием называется сбор и анализ данных о начале и характере течения заболевания, видовом составе и численности плотности посадки рыб; размерах и характере водоема, особенностях его водоснабжения: Эпизоотологическое исследование проводят путем опроса ихтиологов или рыбоводов и по ветеринарной отчетности о состоянии обследуемого водоема или хозяйства за предыдущие годы. Клиническим исследованием называется внешний осмотр живой или недавно уснувшей рыбы и описание признаков заболевания. Клиническому осмотру подвергают по возможности не менее рыб каждого вида, обитающего в обследуемом водоеме. При этом отмечают также отклонения в поведении рыб, характере дыхания, реакции на внешние раздражения.

Быстрый переход:

Вход в систему

Наименование секции: Исследовательская работа. Автор работы: Кудряшова Анастасия Григорьевна. Научный руководитель: Уманец Ольга Алексеевна. Таганрог г.

исследование рыбы на гельминты
Фото: исследование рыбы на гельминты

Гельминты рыб cintakata.com

Паразитологическому исследованию необходимо подвергать живых или свежеуснувших рыб всех возрастных категорий. Рыб вскрывают по методу, разработанному К. Скрябиным и модифицированному применительно к рыбам В. Догелем и Э. Органы и ткани рыб исследуют в следующем порядке:

Паразиты, что живут в речной рыбе. Часть вторая ПИЯВКА кровосос! Рыбы Амура.


Паразитологическое исследование рыб Акваловер

После вскрытия рыбы, в процессе ее приготовления, люди, обнаруживая крупных червей, выбрасывают ее, несмотря на то, что многие разновидности паразитов крупных размеров являются абсолютно безобидными для человека. Глава Института: Реальную опасность представляют мелкие виды паразитических червей. Как правило, рыболовы, знающие толк в данном деле, не разбрасываются полезным рыбным мясом, а вооружившись определенными знаниями, умело расправляются с паразитами без ущерба для собственного холодильника. Все сорта промысловой исследование рыбы на гельминты без исключения перед отправкой на продажу в обязательном порядке проходят специальный контроль ветеринарно-санитарного типа.

исследование рыбы на гельминты

ГЕЛЬМИНТОЗЫ РЫБ

официальный сайт исследование рыбы на гельминты

В областях, краях, автономных республиках, особенно в районах, эндемичных по дифиллоботриозу и описторхозу, где на пресноводных водоемах производится промысловый и любительский лов щуки, налима, окуня, ерша, пеляди, сига, хариуса, омуля, ряпушки, гольца и др. Организация и проведение исследований рыбы из естественных водоемов и водохранилищ на зараженность личинками дифиллоботриид и описторхиса осуществляются территориальными санэпидстанциями и ветеринарными лабораториями 1 раз в 3 года. Заключение о порядке использования и обработки рыбы выдается территориальными СЭС. При этом рыбохозяйственные организации представляют необходимое в соответствии с п. В случае исследования рыбы из вышеуказанных водоемов специалистами ихтиопатологической службы и других учреждений они должны сообщить о результатах исследований в соответствующие территориальные санэпидстанции и главному ветеринарному врачу района.

Рыба из водоемов, где проводится ее лов членами рыболовных любительских обществ, представляется для исследования за счет районных отделений этих обществ и их транспортом. Срок доставки рыбы устанавливается на местах областными краевыми, АССР санитарно-эпидемиологическими станциями и ветеринарными лабораториями совместно с областными или другими соответственно управлениями рыбохозяйственных организаций. На зараженность личинками дифиллоботриид исследуются: На зараженность личинками описторхиса исследуются рыба семейства карповых, язь, лещ, плотва различных подвидов чебак, сорога, вобла и др. При обнаружении в водоеме рыбы, зараженной личинками дифиллоботриид и описторхиса, всю рыбу соответствующих видов независимо от степени зараженности ее следует считать условно годной и допускать к использованию в пищу только после обработки в соответствии с действующими инструкциями по технологической обработке рыбы и п.

Реализация населению свежей и охлажденной необеззараженной условно годной рыбы через предприятия общественного питания и торговли запрещается. В случае отсутствия возможности обработки условно годной рыбы на местах лова допускается ее транспортировка к ближайшему пункту обработки в пределах района, области. Использование условно годной рыбы в пищевых целях допускается в зависимости от ее вида после обработки путем засолки, замораживания, копчения, вяления, специальной кулинарной обработки или консервирования.

Посол условно годной рыбы осуществляется рыбообрабатывающими предприятиями:. При посоле икры в качестве самостоятельного продукта обеззараживание личинок лентецов осуществляется следующими методами:. На рыбообрабатывающих предприятиях необходимо обеспечить проведение мер профилактики заражения личинками лентецов и описторхиса работающих. Лица, занятые переработкой условно годной рыбы, должны соблюдать меры личной профилактики, в частности не допускать пробования сырого рыбного фарша и других полуфабрикатов рыбных блюд и икры, своевременно обеззараживать отходы, получаемые при разделке рыбы, согласно п. Запрещается сбрасывать в водоемы, на мусорные свалки и скармливать сырую рыбу и ее отходы домашним плотоядным и всеядным животным и пушным зверям клеточного содержания. Отходы, получаемые при обработке рыбы, направляются для переработки на кормовую рыбную муку, а в случае отсутствия жиромучных установок провариваются в котлах в течение 30 мин. На рынках, в помещениях баз рыболовных обществ, в рыбодобывающих предприятиях и рыбоприемных пунктах в районах, эндемичных по дифиллоботриозу и описторхозу, вывешивают плакаты с перечнем местных видов рыб, от которых можно заразиться дифиллоботриозом и описторхозом.

В плакатах необходимо указать методы обеззараживания рыбы, в частности режимы термической обработки рыбы. Термически обработанная рыба считается обеззараженной при поджаривании в пластованном виде с величиной куска до г. Куски рыбы, приготовленные для жарения, вначале укладывают на сковородку кожей вниз. Общее время жарения кусков мелкой рыбы и котлет из рыбного фарша массой до г не менее 25 мин. Варка такой рыбы и фарша проводится в течение 20 мин. Особенно важно проводить санитарно-просветительную работу на территориях с наличием неблагополучных водоемов, не имеющих рыбопромыслового значения. Ответственность за выполнение настоящих положений по обработке рыбы, зараженной личинками дифиллоботриид и описторхисов, возлагается на руководителей рыбообрабатывающих предприятий. Лица, виновные в выпуске для питания населения необеззараженной условно годной рыбы, зараженной личинками дифиллоботриид и описторхисов, с нарушением данных правил привлекаются к ответственности.

Контроль за выполнением мероприятий возлагается на санитарно-эпидемиологические станции, органы государственного ветеринарного контроля, а также ведомственные санитарную и ихтиопатологическую службы Минрыбхоза СССР. С утверждением настоящей Инструкции отменяются "Временные правила санитарно-гельминтологической оценки рыбы, зараженной плероцеркоидами широкого лентеца, направляемой в предприятия рыбной промышленности и общественного питания", утвержденные Министерством здравоохранения СССР 17 мая г. Длина живых плероцеркоидов от 1 мм до 2,5 см и более. Личинки беловато-молочного цвета. Характерно наличие на теле личинок глубоких складок ложная сегментация , которые сохраняются даже после расслабления в воде. Сколекс у плероцеркоидов, только что извлеченных из рыбы, обычно втянут инвагинирован , и личинка имеет булавовидную форму, но при помещении ее в теплую воду сколекс вскоре вытягивается при этом становятся хорошо заметны и присасывательные щели и перистальтически сокращается.

Личинка активно движется, то сокращаясь, то сильно вытягиваясь. Сколекс при этом приобретает вид удлиненного, заостренного на конце конуса. Установить наличие сколекса у личинок очень важно, так как иногда за плероцеркоидов могут быть приняты фрагменты их или других цестод. Исследование живых плероцеркоидов проводят с помощью лупы и микроскопа. Плероцеркоида помещают на предметное стекло в каплю воды или физиологического раствора, накрывают покровным стеклом и исследуют вначале под малым, а затем под большим увеличением микроскопа. Для личинок лентеца широкого характерна толстая до 22 мкм кутикула, лишенная ворсинок на теле и сколексе. Субкутикулярная "светлая" зона пространство между кутикулой и зоной сплошного расположения известковых телец у личинок лентеца широкого узкая, не шире толщины кутикулы.

Характерно также наличие желез проникновения не только в сколексе, но и в теле личинки; субкутикулярная мускулатура однослойная что хорошо выявляется на поперечных срезах. При установлении видовой принадлежности плероцеркоидов используют также способность личинок к осморегуляции. Для этого извлеченного из физиологического раствора плероцеркоида быстро промывают в воде и помещают в чашку Петри с водой. Плероцеркоиды лентеца широкого выживают в воде около суток. Продолжительность жизни плероцеркоидов других видов короче см. Не образуется анатомически выраженных капсул при локализации личинок в икре, а у рыб некоторых видов например, у сибирской ряпушки наряду с плероцеркоидами в капсулах встречаются личинки, свободно залегающие в полости тела. Личинки кремового или желтоватого цвета. Развитые плероцеркоиды длиной 1 - 10 см, а отдельные особи - до 25 см. Тело имеет глубокие складки, которые при расслаблении личинок исчезают. У живых сокращенных плероцеркоидов сколекс втянут, выступающие вперед участки тела образуют у головного конца подобие "плечей".

В теплом физиологическом растворе личинки столь же активны, как и плероцеркоиды лентеца широкого. По краям ботридиальных листков заметны характерные втяжения, то есть эти края приобретают фестончатый вид. При микроскопировании живых личинок на кутикуле видны редкие короткие ворсинки, которые на сколексе едва заметны. Субкутикулярная зона широкая, в 1,5 - 3 раза шире кутикулы. Из гистологических признаков характерны:.

В воде личинки лентеца чаечного выживают до 2,5 ч, молодые плероцеркоиды - не более 1 ч. У расслабленных личинок тело лишается складок, сколекс приобретает миндалевидную форму, ботридиальные щели широко раскрываются, тело становится полупрозрачным. Кроме описанных плероцеркоидов, у рыб встречаются личинки других видов лентецов, не имеющих эпидемиологического значения, но похожих на первых. Они встречаются преимущественно у лососевых ряпушка и др. В воде выживают не более 5 - 7 мин. Санитарно-гельминтологической экспертизе подлежат виды рыб, являющиеся дополнительными хозяевами дифиллоботриид. На зараженность исследуют щук, налимов, окуней, ершей, также лососевых, хариусовых, корюшковых рыб лосось, озерная форель, омуль, пелядь, чир, сиг, муксун, тугун, нельма, кета, нерка, кумжа, таймень, голец, хариус, корюшка. Рыбу исследуют свежевыловленную. Перед вскрытием рыбу отмывают от слизи, протирают, взвешивают и измеряют ее длину. Для определения возраста берут: Очищенную чешую помещают в чешуйную книжку из бумаги - от каждой рыбы на отдельный лист, на котором отмечают номер рыбы, вид, время, место отлова и число найденных плероцеркоидов.

Рыбу можно вскрывать в большой эмалированной кювете, но лучше это делать на широкой гладкой доске. При вскрытии рыбы рекомендуется придерживаться определенной последовательности. Сначала делают короткий надрез вперед от анального отверстия, в надрез вводят тупой конец ножниц и разрезают рыбу вдоль по средней линии брюшка. Разрез продолжают до угла нижней челюсти.

исследование рыбы на гельминты

Исследование рыбы на гельминты допустимая норма гельминтов в рыбе

Паразитологическому исследованию необходимо подвергать живых или свежеуснувших рыб всех возрастных категорий. Рыб вскрывают по методу, разработанному К. Скрябиным и модифицированному применительно к рыбам В. Догелем и Э. Органы и ткани рыб исследуют в следующем порядке: Результаты исследования вносят в рабочий журнал, где указывают дату исследования, пол, возраст, длину рыбы, результаты паразитологического исследования с предварительным и окончательным определением вида паразитов. Внешний покров. При наружном осмотре кожного покрова и плавников собирают, предварительно определяют и фиксируют для последующего изучения всех паразитов, видимых простым глазом паразитические ракообразные, пиявки и др.

После этого приступают к микроскопии мазков из соскобов со всей поверхности тела или из нескольких участков крупные рыбы. Скальпелем соскабливают слизь с кожного покрова и плавников, помещают ее на предметное стекло и смешивают с ранее нанесенными туда же каплями прокипяченной и остуженной воды. Накрывают покровным стеклом и рассматривают сначала под лупой, а потом при малом увеличении микроскопа. Исследование рыб на возбудителя костиоза ведут при среднем и большом увеличении микроскопа. Кроме возбудителя костиоза, на коже рыб паразитируют другие жгутиконосцы, а также инфузории, моногенетические сосальщики, паразитические рачки. Весьма часто на них можно обнаружить споровиков, локализующихся в дермальных бугорках. Крупных паразитов рачков, гельминтов подсчитывают в абсолютных числах, а мелких споровиков, инфузорий и других простейших - в относительных, то есть подсчитывают число паразитов в десяти полях зрения микроскопа и определяют средние показатели.

При этом высчитывают по каждому паразиту в отдельности экстенсивность и интенсивность инвазии для каждого вида и возраста рыб. В случае затруднения видового определения тех или иных паразитов их необходимо консервировать в соответствующих жидкостях и сохранять для дальнейшей камеральной обработки. На склянку обязательно наклеивают этикетку. Все жаберные дуги вынимают, помещают на предметное стекло, собирают всех видимых паразитов, их подсчитывают и фиксируют.

Соскоб с жаберных лепестков или целые жаберные дуги с несколькими каплями воды зажимают между двумя предметными стеклами так, чтобы они стали прозрачными, и исследуют при малом увеличении микроскопа. Споровики, некоторые инфузории и личинки сосальщиков могут находиться не на поверхности жаберных лепестков, а в особых соединительнотканных образованиях бугорках ; обнаружить и извлечь их можно только после разрыва стенки бугорка при помощи препаровальных игл.

В кровеносных сосудах жабр могут находиться яйца сангвиникол, споры и мицелии гриба. Для обнаружения паразитов глаза извлекают из глазных впадин, помещают на предметное стекло и вскрывают острыми ножницами с внутренней каудальной стороны. Извлеченное стекловидное тело, хрусталик и содержимое передней камеры глаза компрессируют между двумя предметными стеклами и просматривают при малом увеличении микроскопа. Для предотвращения высыхания крови края покровного стекла обмазывают вазелином. Одновременно несколько мазков крови высушивают на воздухе, фиксируют в метиловом спирте, окрашивают по Романовскому - Гимза или гематоксилином и также исследуют под микроскопом. Брюшная полость. Дугообразный разрез к основанию левого грудного плавника начинают от анального отверстия, вводя непосредственно в него тупой конец одной из брани ножниц. Вскрытую брюшную полость осматривают, а имеющиеся на серозных покровах и брыжейке бугорки исследуют под микроскопом.

Для исследования сердце помещают в бактериологическую чашку с физиологическим раствором, вскрывают его полости, промывают и образовавшийся осадок исследуют под микроскопом на наличие возбудителя сангвиниколеза. Чтобы обнаружить паразитов, обитающих в печени, ее делят на небольшие кусочки, которые компрессируют и исследуют под лупой и затем при слабом увеличении микроскопа. Желчный пузырь. Для обнаружения паразитов желчный пузырь вырезают, помещают на предметное стекло, разрезают ножницами, делают соскоб с внутренней оболочки стенки пузыря.

Соскоб и сам желчный пузырь помещают между двумя предметными стеклами и исследуют под лупой и микроскопом. В желчном пузыре можно обнаружить простейших и сосальщиков. Селезенку помещают между двумя стеклами, сжимают до прозрачности и исследуют под микроскопом. Для обнаружения паразитов почки компрессируют и исследуют под микроскопом. В почках можно найти споровиков и яйца сосальщиков. Плавательный пузырь. В случае необходимости соскоб с внутренней оболочки плавательного пузыря можно исследовать под микроскопом компрессорным методом.

Мочевой пузырь. Методика исследования сходна с исследованием желчного пузыря. В мочевом пузыре можно обнаружить сосальщиков, споровиков и инфузорий. Половые органы. Для обнаружения паразитов железу по частям компрессируют между стеклами и просматривают под микроскопом. Желудочно-кишечный тракт. Пищевод, желудок и кишечник извлекают, освобождают от жира и печени, расправляют и вскрывают ножницами, начиная с пищевода. По ходу вскрытия обнаруженных крупных паразитов ленточных и круглых червей, сосальщиков извлекают и помещают в физиологический раствор. Содержимое из различных отделов желудочно-кишечного тракта исследуют компрессорным методом под микроскопом.

Затем с помощью скальпеля делают глубокий соскоб со слизистой оболочки из нескольких мест и исследуют на наличие микроскопических паразитов октомитус. Чтобы обнаружить мелких паразитов, берут небольшие кусочки мышц из различных частей тела и исследуют компрессорным методом под лупой и под микроскопом при малом увеличении. В мышцах можно обнаружить споровика плистофору и его споры. Головной и спинной мозг исследуют компрессорным методом. В этих органах можно обнаружить споровиков. Методы окраски. Готовую, имеющуюся в продаже краску Романовского перед окрашиванием разводят из расчета 2 - 3 капли на 1 мл нейтральной дистиллированной воды. Если готовая краска отсутствует, ее можно приготовить самим. Оба раствора хранят отдельно. Перед употреблением на 1 мл нейтральной дистиллированной воды прибавляют по две капли каждого раствора.

Продолжительность окраски 20 - 40 минут. Эритроциты окрашиваются в красный или розовый цвет, протоплазма паразитов и лейкоцитов - в синий, ядра паразитов - в красный, а лейкоцитов - в фиолетовый. Раствор метиленовой сини перед употреблением разводят дистиллированной водой 1: Эритроциты получаются красновато-фиолетовые, протоплазма простейших кровепаразитов - ярко-голубая, ядра лейкоцитов фиолетовые. Окрашивать инфузории можно также гематоксилином Делафильда или квасцовым кармином. Паразитических жгутиконосцев окрашивают железным гематокслином или по Романовскому - Гимза. Трематод и цестод окрашивают квасцовым кармином. Фиксированные в спирте препараты промывают в течение нескольких часов в проточной или часто сменяемой воде, затем помещают в краску от 1 минуты до нескольких часов в зависимости от толщины гельминта. Продолжительность окраски можно контролировать, исследуя препараты под микроскопом.

Окрашенные препараты переносят в дистиллированную воду, где в течение нескольких минут тщательно промывают от краски. Обезвоженных паразитов просветляют гвоздичным маслом и ксилолом. Цестод, так же как и трематод, можно окрашивать гематеи-ном Майера 1 г гематеина растворяют в 1 л дистиллированной воды с последующим добавлением 0,2 г йодноватокислого натрия и 50 г калийных квасцов. Гематеин допускает как прогрессивное, так и регрессивное окрашивание без дифференцировки или с ней. При прогрессивном способе красят только 30 минут, при регрессивном - в течение 24 часов. Хорошие результаты получают при окраске мелких цестод молочнокислым кармином по Блажину. Молочную кислоту разводят вдвое дистиллированной водой, добавляют в нее небольшое количество кармина в зависимости от желаемой степени окраски и жидкость кипятят. Красить лучше свежие, нефиксированные объекты. Продолжительность окраски контролируют под микроскопом, а в случае перекрашивания объект переносят в цельную молочную кислоту для обесцвечивания.

Окрашенный препарат промывают в течение 20 - 60 минут водопроводной водой и помещают в бальзам. Для окраски крупных цестод этот способ модифицирован. Цестод в течение суток промывают в проточной или часто сменяемой водопроводной воде при комнатной температуре. Высохший, очень плотно приставший к стеклу препарат заливают канадским бальзамом или канифолью, растворенной в смеси, состоящей из равных частей хлороформа и абсолютного спирта. Паразитических рачков исследуют в той же жидкости, в которой они хранятся. Красить их не обязательно.

исследование рыбы на гельминты


Исследование рыбы на наличие паразитов МегаЛекции

Определение семейств насекомых отряда пухопероедов по Н. В современный период обострения экологических исследование рыбы на гельминты важное значение приобретают вопросы охраны природы. Тем более, что в наше время воздействие человека на природу приобретает огромные размеры и нередко оказывает отрицательное влияние. Среди составных его немаловажное значение имеет биологическое загрязнение среды вирусами, бактериями, яйцами и личинками гельминтов, вредными насекомыми, клещами и т. Для контроля зараженности окружающей среды возбудителями паразитозов существует ряд методов исследований. Некоторые из них будут изложены ниже. Исследование проб почвы.


ОТЗЫВЫ: 1 к посту “Исследование рыбы на гельминты

Добавить комментарий

Ваш e-mail не будет опубликован. Обязательные поля помечены *